注1:整個(gè)綴合過(guò)程可以在 內(nèi)完成。但是,綴合前對(duì)APC 的純化可能需要24-48小時(shí)。除了下面
列出的材料外,您還需要濃度至少為2mg/ml的抗體溶液。請(qǐng)您在進(jìn)行APC抗體綴合實(shí)驗(yàn)之前熟悉
如何使用脫鹽柱以及如何吸光度光譜。
注 2 : SMCC-APC綴合物非常穩(wěn)定(在“交換緩沖液”中,在4℃下至少可以穩(wěn)定幾個(gè)月)。因此, 如果您需要節(jié)省一部分時(shí)間,可以選擇同時(shí)綴合10毫克或多的 APC,并將其用于幾次抗體實(shí)驗(yàn)(在幾周內(nèi))。
一 .APC的制備
1. 將APC純化。綴合前的濃度通常為 5-10mg/ml。
注意:APC在綴合前作為SAS(銨鈉)沉淀物穩(wěn)定。如果將APC 以SAS沉淀物的形式儲(chǔ)存,則在使用前進(jìn)行大量純化。在用每毫升1升的“透析緩沖液”透析之前,用每毫升1升APC 的PBS進(jìn)行透析2 次。
2.使用1.7毫克APC 修飾每毫克lgG, 包括在緩沖液交換過(guò)程中損失的額外10%。
3.檢查APC的純度和濃度,請(qǐng)測(cè)量280、620和655nm 處的吸光度。(1 mg/ml的APC 在 655nm處的OD為 5.9 ) 。 655/620比率>1.4 表明雜質(zhì)被充分去除;655/280比率>4表明所有其他蛋白質(zhì)均已充分去除。
二.APC的活化
1.使用前在無(wú)水DMSO中制備10mg/ml的SMCC 儲(chǔ)備溶液。
2.每毫克APC加入6μlSMCC,并進(jìn)行渦旋。將反應(yīng)管用鋁箔包好,室溫下旋轉(zhuǎn)60 分鐘。
3.將純化的 APC 過(guò)凝膠過(guò)濾柱來(lái)交換緩沖液。
注意:對(duì)于失敗或效果較差的結(jié)合,增加或減少SMCC 相對(duì)于APC 的量,可能會(huì)有所好轉(zhuǎn)。
三.1gG 還原
1.在蒸餾水中制備1M DTT(15.4 mg/100 μl) 的新鮮溶液。
2.1gG溶液濃度應(yīng)為 4 mg/ml或高,這樣效果比較好。還原幾乎可以在任何緩沖液中進(jìn)行;MES 、磷酸鹽和 TRIS 緩沖液(pH 范圍為6至8)已被驗(yàn)證可以使用。如果抗體濃度2mg/ml,則應(yīng)濃縮。緩沖液交換柱上的損失應(yīng)額外增加10%。
3.用DTT配制20mMlgG溶液:每毫升 IgG溶液加入20μlDTT 原液并攪拌。室溫下靜置30分鐘,額外攪拌 (以盡量減少半胱酸再氧化為胱酸)。
4.將還原的lgG 通過(guò)預(yù)平衡的“交換緩沖液”過(guò)濾柱。收集0.25毫升的級(jí)分,測(cè)定蛋白濃度,并將含
有大部分lgG 的級(jí)分匯集在一起??梢酝ㄟ^(guò)分光光度法或比色法完成。
5.此步驟后盡快進(jìn)行綴合。
注意:對(duì)于結(jié)合較差或失敗的情況,降低 DTT 濃度可能會(huì)有所幫助。
詞條
詞條說(shuō)明
通過(guò)流式細(xì)胞術(shù)進(jìn)行PBMC表型分析
通過(guò)流式細(xì)胞術(shù)進(jìn)行 PBMC(外周血單核細(xì)胞)?分析可廣泛應(yīng)用于研究和臨床研究,包括 HIV 研究、癌癥和基于細(xì)胞因子的反應(yīng)的基礎(chǔ)研究。PBMCs通常通過(guò)密度梯度離心或磁珠分離從外周血、骨髓和臍帶中提取。這些方法旨在將白細(xì)胞與紅細(xì)胞 (RBC) 等其他細(xì)胞成分分離。流式細(xì)胞術(shù)的一個(gè)常見(jiàn)應(yīng)用是 PBMC 表型分析。該技術(shù)測(cè)量被稱(chēng)為“分化簇”(CD) 標(biāo)記的細(xì)胞表面分子的表達(dá),以識(shí)別、區(qū)分和
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